DOI: 10.1021/acs.biomac.0c01445
在智能生物材料中加入對細胞有指導意義的化學和地形線索,并結合適當的物理刺激,可能有助于提高神經再生率。在這方面,研究者探索了基于聚[2-甲氧基-5-(2-乙基己基氧基)-1,4-亞苯基亞乙烯基](MEH-PPV)的導電電紡納米纖維的表面功能化,并與外部施加的電刺激相結合以促進神經元的生長潛能。此外,還深入研究了納米纖維的電壓依賴性導電機制,以將其固有的導電性質與電刺激的神經元表達聯系起來。使用3-氨基丙基三乙氧基硅烷(APTES)和1,6-己二胺(HDA)替代昂貴的生物分子涂層(例如膠原蛋白)進行表面功能化,從而實現細胞粘附。納米纖維均勻、多孔、導電、機械強度高并且在生理條件下是穩定的。表面胺化可增強生物相容性、3T3細胞粘附和擴散,而神經元模型大鼠PC12細胞系在表面功能化墊上表現出比非功能化墊更好的分化。當與電刺激(ES)結合使用時,這些墊子顯示出與無ES條件的膠原蛋白涂層墊子相當或更快的神經突起形成和延伸。研究結果表明,表面胺化結合ES可以為使用MEH-PPV基神經支架提供更快的神經再生。
圖1.本報告中所執行的工作計劃。靜電紡絲MEH-PPV和聚己內酯(PCL)共混物以產生納米纖維支架,然后進行表面官能化以賦予氨基官能團,從而使其具有生物活性。評估成纖維細胞在功能化納米纖維上的活性以確認其生物活性,然后對PC12細胞進行低水平電刺激以評估其作為神經支架的潛力。納米纖維固有的電壓依賴性導電機理與改善的神經突發育相互關聯。
圖2.(A)在10K放大倍率下以四種體積比靜電紡絲制備的不同MEH:PPV:PCL納米纖維的掃描電子顯微照片(比例尺=4μm),如圖所示。在150K放大倍率下獲得的插圖(比例尺=400nm)。(B)不同MEH:PPV:PCL納米纖維的XRD圖譜,如圖所示,以及最能描述其衍射圖的XRD曲線的Voigtian擬合。
圖3.(a)未官能化和官能化MEH-PPV:PCL電紡納米纖維的I-V特性和(b)Kaiser擬合(正向偏置)。
圖4.(A)原始和功能化電紡墊的應力-應變行為;(B)剛度常數(E)和極限拉伸強度(UTS)。
圖5.原始和功能化MEH-PPV:PCL納米纖維在生理環境下的穩定性研究。(A)在中性磷酸鹽緩沖液中孵育45天期間的質量損失曲線;(D)纖維直徑的變化;(E)與PBS孵育前后,納米纖維墊薄層電阻(Rs)的變化。
圖6.用(A)APTES和(B)HDA功能化前后,MEH-PPV:PCL電紡納米纖維的振動光譜。
圖7.(A)XPS全掃描結果顯示原始的和功能化MEH-PPV:PCL電紡納米纖維的表面元素組成。(B)MP20:80,(C)AFMP20:80和(D)HFMP20:80的C1s XPS光譜的峰解卷積。
圖8.FT-IR和XPS分析表明,PCL與APTES(方案I)和HDA(方案II)相互作用的擬議方案。
圖9.FT-IR和XPS分析表明,MEH-PPV與APTES(方案III)和HDA(方案IV)相互作用的擬議方案。
圖10.培養24小時后,原始和功能化MEH-PPV:PCL電紡墊上的(A)3T3和(B)PC12細胞活性(-ve對照:TCP和+ve對照:馬來酸叔丁酯)。細胞活性百分比表示為平均值±S.D.,n=4。*和#分別表示原始墊和功能墊在p≤0.01和p≤0.05時的統計學顯著性。
圖11.(A)用鈣黃綠素AM(綠色),EthD-1(紅色)和DAPI(藍色)染色的帶有相襯覆蓋物的3T3成纖維細胞的活死成像數據(比例尺=75μm);(B)細胞擴散百分比的定量分析;(C)24和48小時后,原始和功能化MEH-PPV:PCL墊上的細胞面積(單個細胞的平均面積)。(B)和(C)中的數據為平均值±S.D.,n=6。*和#分別表示p≤0.01和p≤0.05時的統計學顯著性。
圖12.在非功能化和功能化MEH-PPV:PCL電紡墊上生長72小時的3T3成纖維細胞的形態(比例尺=20μm)。插圖顯示帶有絲狀偽足/板狀偽足樣延伸的放大圖像(比例尺=10μm)。
圖13.(A)在分化條件下培養7天的PC12細胞的微管蛋白免疫染色,在不同MEH-PPV:PCL墊上用DAPI復染,如圖所示。神經元胞體用白色箭頭表示,而紅色箭頭表示帶有細長和分支神經突的神經元,其中包含或不包含生長錐(比例尺=75μm)。神經突發育和延伸的定量表現為(B)具有神經突的細胞百分比和(C)每個細胞的神經突長度(平均神經突長度)。*和#分別表示原始墊在p≤0.01和p≤0.05時的統計學顯著性。
圖14.如圖所示,在不同MEH-PPV:PCL墊上生長1周的PC12細胞的SEM圖像。紅色箭頭表示神經突在不同電紡墊上的突出部分。比例尺=5μm。
圖15.(A)未經電刺激和經電刺激的PC12細胞在表面功能化和膠原蛋白涂覆MEH-PPV:PCL墊上長達1周的Beta(III)免疫染色(比例尺=75μm)。定量分析結果顯示(B)帶有神經突的細胞百分比,(C)每個細胞的神經突,(D)每個細胞的神經突長度,以及(E)在有ES和無ES的不同導電墊上分化的PC12細胞的中位數神經突長度。數據為平均值±S.D.,*和#分別表示p≤0.01和p≤0.05時的統計學顯著性。
圖16.生物材料固有電導率對神經突發育和生長的影響。(A)在功能化和膠原蛋白涂覆MEH-PPV:PCL墊上(A)帶有神經突的細胞計數和(B)平均神經突長度相對于其固有低場電導(Go)值的變化。